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瓊脂糖凝膠電泳技術(shù)

發(fā)布時(shí)間:2024-11-22
一、瓊脂糖凝膠的特點(diǎn)
天然瓊脂(agar)是一種多聚糖,主要由瓊脂糖(agarose,約占80%)及瓊脂膠(agaropectin)組成。瓊脂糖是由半乳糖及其衍生物構(gòu)成的中性物質(zhì),不帶電荷,而瓊脂膠是一種含硫酸根和羧基的強(qiáng)酸性多糖,由于這些基團(tuán)帶有電荷,在電場(chǎng)作用下能產(chǎn)生較強(qiáng)的電滲現(xiàn)象,加之硫酸根可與某些蛋白質(zhì)作用而影響電泳速度及分離效果。因此,目前多用瓊脂糖為電泳支持物進(jìn)行平板電泳,其優(yōu)點(diǎn)如下。
(1)瓊脂糖凝膠電泳操作簡(jiǎn)單,電泳速度快,樣品不需事先處理就可以進(jìn)行電泳。
(2)瓊脂糖凝膠結(jié)構(gòu)均勻,含水量大(約占98%~99%),近似自由電泳,樣品擴(kuò)散較自由電流,對(duì)樣品吸附極微,因此電泳圖譜清晰,分辨率高,重復(fù)性好。
(3)瓊脂糖透明無紫外吸收,電泳過程和結(jié)果可直接用紫外光燈檢測(cè)及定量測(cè)定。
(4)電泳后區(qū)帶易染色,樣品極易洗脫,便于定量測(cè)定。制成干膜可*保存。
目前,常用瓊脂糖作為電泳支持物,分離蛋白質(zhì)和同工酶。將瓊脂糖電泳與免疫化學(xué)相結(jié)合,發(fā)展成免疫電泳技術(shù),能鑒別其他方法不能鑒別的復(fù)雜體系,由于建立了*微量技術(shù),0.1ug蛋白質(zhì)就可檢出。
瓊脂糖凝膠電泳也常用于分離、鑒定核酸,如dna鑒定,dna限制性內(nèi)切核酸酶圖譜制作等。由于這種方法操作方便,設(shè)備簡(jiǎn)單,需樣品量少,分辨能力高,已成為基因工程研究中常用實(shí)驗(yàn)方法之一。
二、dna的瓊脂糖凝膠電泳
瓊脂糖凝膠電泳對(duì)核酸的分離作用主要是依據(jù)它們的相對(duì)分子量質(zhì)量及分子構(gòu)型,同時(shí)與凝膠的濃度也有密切關(guān)系。
1、核酸分子大小與瓊脂糖濃度的關(guān)系
(1)dna分子的大小 在凝膠中,dna片段遷移距離(遷移率)與堿基對(duì)的對(duì)數(shù)成反比,因此通過已知大小的標(biāo)準(zhǔn)物移動(dòng)的距離與未知片段的移動(dòng)距離時(shí)行比較,便可測(cè)出未知片段的大小。但是當(dāng)dna分子大小*過20kb時(shí),普通瓊脂糖凝膠就很難將它們分開。此時(shí)電泳的遷移率不再依賴于分子大小,因此,就用瓊脂糖凝膠電泳分離dna時(shí),分子大小不宜*過此值。
(2)瓊脂脂糖的濃度 如下表所示,不同大小的dna需要用不同濃度的瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳分離。
表 瓊脂糖濃度與dna分離范圍
瓊脂糖濃度 /% 0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 2.0
線狀dna大小/kb 60-5 20-1 10-0.8 7-0.5 6-0.4 4-0.2 3-0.1
2、核酸構(gòu)型與瓊脂糖凝膠電泳分離的關(guān)系
不同構(gòu)型dna的移動(dòng)速度次序?yàn)椋汗﹥r(jià)閉環(huán)dna(covalently closed circular,cccdna)>直線dna>開環(huán)的雙鏈環(huán)狀dna。當(dāng)瓊脂糖濃度太高時(shí),環(huán)狀dna(一般為球形)不能進(jìn)入膠中,相對(duì)遷移率為0(rm=0),而同等大小的直線雙鏈dna(剛性棒狀)則可以長(zhǎng)軸方向前進(jìn)(rm>0),由此可見,這三種構(gòu)型的相對(duì)遷移率主要取決于凝膠濃度,但同時(shí),也受到電流強(qiáng)度、緩沖液離子強(qiáng)度等的影響。
3、電泳方法
(1)凝膠類型
用于分離核酸的瓊脂糖凝膠電泳可分為垂直型及水平型(平板型)。水平型電泳時(shí),凝膠板*浸泡在電極緩沖液下1-2mm,故又稱為潛水式。目前更多用的是后者,因?yàn)樗颇z和加樣比較方便,電泳槽簡(jiǎn)單,易于制作,又可以根據(jù)需要制備不同規(guī)格的凝膠板,節(jié)約凝膠,因而較受歡迎。
(2)緩沖液系統(tǒng)
缺少離子時(shí),電流太小,dna遷移慢;相反,高離子強(qiáng)度的緩沖液由于電流太大會(huì)大量產(chǎn)熱,嚴(yán)重時(shí),會(huì)造成膠熔化和dna的變性。
常用的電泳緩沖液有edta(ph8.0)和tris-乙酸(tea),tris-硼酸(tbe)或tris-磷酸(tpe)等,濃度約為50mmol/l(ph7.5~7.8)。電泳緩沖液一般都配制成濃的貯備液,臨用時(shí)稀釋到所需倍數(shù)。
tae緩沖能力較低,后兩者有足夠高的緩沖能力,因此更常用。tbe濃溶液*貯存會(huì)出現(xiàn)沉淀,為避免此缺點(diǎn),室溫下貯存5×溶液,用時(shí)稀釋10倍0.5×工作溶液即能提供足夠緩沖能力。
(3)凝膠的制備
以稀釋的電極緩沖液為溶劑,用沸水浴或微波爐配制一定濃度的溶膠,灌入水平膠框或垂直膠膜,插入梳子,自然冷卻。
(4)樣品配制與加樣
dna樣品用適量tris-edta緩沖液溶解,緩沖液內(nèi)含有0.25%溴酚藍(lán)或其他指示染料,含有10%-15%蔗糖或5%~10%甘油,以增加其比重,使樣品集中。為避免蔗糖或甘油可能使電泳結(jié)果產(chǎn)生u形條帶,可改用2.5%ficoll(聚蔗糖)代替蔗糖或甘油。
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